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細胞培養的三大步驟—復甦、傳代、凍存

細胞培養是指在體外模擬生物體內環境(無菌、適宜溫度、酸鹼度和一定營養條件等),使之生存、生長、繁殖並維持主要結構和功能的一種方法。

細胞培養也叫細胞克隆技術,是細胞生物學研究方法中重要和常用技術,通過細胞培養既可以獲得大量細胞,又可以藉此研究細胞的信號轉導、細胞的合成代謝、細胞的生長增殖等。

細胞培養的具體步驟可分為:細胞復甦、細胞傳代、細胞凍存

一、細胞復甦

1.細胞復甦的原則:快速融化

在復甦細胞時必須遵循快速融化的原則,即必須將凍存在 -196℃液氮中的細胞快速融化至 37 ℃,因為這樣可使凍存時細胞外的冰晶迅速融化,避免冰晶緩慢融化時進入細胞形成再結晶,對細胞造成損害。

2.細胞復甦操作過程

細胞復甦過程

二、細胞傳代

1.細胞傳代中遇到的問題及解決方案:

(1)傳代密度過高

一旦細胞養太久至融合度過高(>90%)才傳代,容易使細胞產生老化現象,甚至是堆疊,再消化細胞時不易吹打成單顆細胞,即便再重新鋪盤傳代,細胞也無法回到原本的特性了。(如:單層細胞,沒長滿就發生堆疊現象)

解決方案:盡量避免融合度過高,鏡下觀察融合度約達到 80%即可傳代分盤。

(2)傳代密度低

哺乳動物貼壁培養細胞,若細胞培養到 80-90%密度需要開始傳代,在傳代接種細胞密度過低,細胞間距離太遠,就無法在細胞間產生黏附及通信作用,幫助訊號傳導並活化細胞;總體細胞量不足,分泌的生長因子濃度會不足以產生利於生長的微環境,以上皆會造成增殖速度遲緩或細胞死亡。

解決方案:細胞傳代時,要進行準確的細胞計數,確保鋪盤的密度。

2.細胞傳代操作過程:

細胞傳代操作過程

三、細胞凍存

1.細胞凍存的基本原理:慢凍

(1) 手動降溫

將細胞依序放在4℃(30分鐘)、-20℃(1小時)、-80℃(過夜)後移至液氮中保存。

(2) 程序降溫盒

是一般最廣泛使用的降溫法,為一種特製冷凍容器(填充異丙醇或依靠特製金屬導熱),使細胞以每分鐘約 -1℃的速度降至 -80℃(過夜),然後移至液氮中保存。

(3) 免液氮程序降溫儀

一種新型自動化程序降溫方法,通過微處理器精確控製冷卻速率和样品溫度,能夠控製樣品線性/非線性降溫,能夠有效減少凍融過程對於細胞或組織的傷害,重現性好、降溫過程可控、成本低。(例如點成生物CRF-1免液氮程序降溫儀)

2.細胞凍存操作過程:

細胞凍存操作過程

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